Neutralisationstitration?
Heyho, ich bräuchte mal eure Hilfe bei diesen beiden Aufgaben. Ich finde dazu absolut nichts im Internet. Danke schonmal im vorraus!
Ist die Redoxreaktion so richtig aufgestellt? Danke
Ich habe gelesen, dass Sn1 und E1 polar protische LM bevorzugen und Sn2 und E2 polar aprotische. Jedoch gibt es ja auch unpolar (a)protische LM. Welche Reaktionen würde diese bevorzugen? Hätte gesagt, dass wo Reaktionen mit einem Übergangszustand mit einem Carbeniumion stattfinden, es wahrscheinlich nicht in den unpolar (a)protischen LM ablaufen könnten oder?
Gegeben sind die Ausgangsstoffe HCl + Zn. Daraus soll das Reaktionsprodukt bestimmt werden. Anscheinend ist die richtige Reaktionsgleichung somit: HCl + Zn –> H2 + Zn²⁺ + 2Cl⁻ Aber wie kommt das zu Stande oder wie kommt man auf das Ergebnis?
Frage in Beschreibung. Weil laut meiner Additionsreaktionsgleichung geht das nicht. Das müsste Nonen sein. Also ist da ein Fehler im Buch?
Hey, ich muss bald eine Präsentation über die Autobatterie halten und ich wollte fragen, was nun die richtige Reaktionsgleichung ist. Ich habe selber eine zu der Batterie erstellt (siehe Bild) aber ich bin mir überhaupt nicht sicher, ob die richtig ist, weil im Internet andere Versionen zu finden sind. Bei meiner Reaktionsgleichung muss ich natürlich…
Let’s look at the titration curve in greater detail. For this I calculated it with c=0.11 mol/l, pK1=1.83 and pK2=9.13.
You see not only the titration curve (black), but also its first wear (white) and the species distribution, i.e. the relative proportions of the different protonation stages:
Between the first and second equivalence points, there is a buffer region in which the pH digs around in the vicinity of the pK2 and does not change greatly when adding base; the ring at V=8.25 exactly in the middle between the two equivalence points marks the buffer point, at the pH=pK2 (in each case 50% of tweener ion and anion are present). The requested pH=8.8 is not far from the pK2 (in the titration curve at V=7.25 ml) and is therefore still in the range of powder (grob pK2±1).
There is also a buffer point in the first half of the titration, but it is not so good to see; it is not exactly half the consumption at the equivalence point, but rather somewhat earlier (V=1.98 ml), because the phenylanaline is already markedly dissociated in the starting solution and the 1:1 point is therefore already reached before the halfway mark.
We can also look at the bufferability of phenylalanine in a somewhat different plot. For this, I draw the species distribution of a 1 mol/l solution in the whole pH range, from 0 to 14. The black curve indicates how much base you have to admit to exactly this pH, and the yellow shows the buffer capacity of the solution.
The proportion of buffer capacity resulting from phenylalanine is indicated orange. You see two maxima exactly around the pKa values. The buffer peak at an approximate pH ≅9 also covers pH=8.8; at pH=8.8 we get a pH of 0.5 units per mole of acid or base added; that is not much smaller than the 0.58 at the maximum at pH=pK2=9.13. Phenylalanine is therefore well suited as a graft in this pH range.
That makes sense, thank you very much.